在緩沖溶液中加入少量強酸或強堿，其溶液pH值變化不大，但若加入酸，堿的量多時，緩沖溶液就失去了它的緩沖作用。這說明它的緩沖能力是有一定限度的。緩沖溶液的緩沖能力與組成緩沖溶液的組分濃度有關(guān)。0.1mol·L-1HAc和0.1mol· L-1NaAc組成的緩沖溶液，比0.01mol·L-1HAc和0.01mol·L-1NaAc的緩沖溶液緩沖能力大。關(guān)于這一點通過計算便可證實。但緩沖溶液組分的濃度不能太大，否則，不能忽視離子間的作用。組成緩沖溶液的兩組分的比值不為1∶1時，緩沖作用減小，緩沖能力降低，當(dāng)c(鹽)/c(酸)為1∶1時△pH小，緩沖能力大。不論對于酸或堿都有較大的緩沖作用。固體試劑的取用:一支藥匙不能同時取用兩種或兩種以上的試劑。尿蛋白定性檢測試劑盒(磺基水楊酸法)
試劑盒實驗技巧：濃洗刷液或許會有結(jié)晶分出，檢測試劑盒稀釋時可在水浴中加溫助溶，洗刷時不影響效果。如標(biāo)本中待測物質(zhì)含量過高（樣本OD值大于標(biāo)準(zhǔn)品孔*孔的OD值），請先將樣本稀釋一定倍數(shù)（n倍）后再測定，核算時請后乘以稀釋倍數(shù)（×5×n）。各步加樣均應(yīng)運用加樣器，并經(jīng)常校正其正確性，以避免實驗誤差。一次加樣時間控制在5分鐘內(nèi)，如標(biāo)本數(shù)目多，舉薦運用排加樣。封板膜只限一次性運用，以避免交叉污染。嚴(yán)格按照說明書的操作進行，檢測試劑盒實驗效果斷定有必要以酶標(biāo)儀讀數(shù)為準(zhǔn)。Gimenez染色液浸洗劑是指藥物與適宜的溶劑或分散介質(zhì)制成的對動物進行全身浸浴的液體試劑。
hochest染色和DAPI染色有什么區(qū)別：1、每個染料有自己獨特的激發(fā)譜線和發(fā)射譜線.這也是以上兩個染料的主要區(qū)別. 另外Hoechest 33258 是膜透性的,因此在活細(xì)胞時候能輕松進入;DAPI是半透性的,有選擇性的進入.因此Hoechest 33258 一般用來染活細(xì)胞,可以長驅(qū)直入;DAPI一般是染固定細(xì)胞.2、兩者都可以用紫外看，參見以下的激發(fā)發(fā)射波長Hoechst 33258的較大激發(fā)波長為346nm，較大發(fā)射波長為460nm；Hoechst 33258和雙鏈DNA結(jié)合后，較大激發(fā)波長為352nm，較大發(fā)射波長為461nm。DAPI的較大激發(fā)波長為340nm，較大發(fā)射波長為488nm；DAPI和雙鏈DNA結(jié)合后，較大激發(fā)波長為364nm，較大發(fā)射波長為454nm。
檢測檢測試劑盒操作步驟:標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋：本檢測試劑盒提供原倍標(biāo)準(zhǔn)品一支，用戶可按照下列圖表在小試管中進行稀釋。加樣：分別設(shè)空白孔（空白對照孔不加樣品及酶標(biāo)試劑，其余各步操作相同）、標(biāo)準(zhǔn)孔、待測樣品孔。在酶標(biāo)包被板上標(biāo)準(zhǔn)品準(zhǔn)確加樣 50μl，待測樣品孔中先加樣品稀釋液 40μl，然后再加待測樣品 10μl（樣品終稀釋度為 5 倍）。加樣將樣品加于酶標(biāo)板孔底部，盡量不觸及孔壁，輕輕晃動混勻。溫育：用封板膜封板后置 37℃溫育 30 分鐘。配液：將 30 倍濃縮洗滌液用蒸餾水 30 倍稀釋后備用。液體試劑的取用方法試劑瓶取用試劑，用左手持量筒（或試管），并用大姆指指示所需體積刻度處。
配制ph計的3mol/L的KCL溶液 ph計的ph電極在使用前都是被護套里的保護液保護著，是為了保持其原有的ph電勢平衡不變，為了測量時會更加精確。這里面就是PH電極的保護液，即 3mol/L的KCL溶液。所以要自己學(xué)會如何配置，使ph電極浸泡在保護液里，這樣就能快速回復(fù)其活性，又能很好的測量了。配制ph計保護液——3mol/L的KCL溶液步驟： 1、計算：KCL摩爾質(zhì)量74.5g/moL, 則KCL質(zhì)量＝3mol×74.5g/mol=223.5g； 2、 稱量：用分析天平稱量KCL=223.5g，注意分析天平的使用； 3、 溶解：在燒杯中用100ml蒸餾水使之完全溶解，并用玻璃棒攪拌； 4、 轉(zhuǎn)移，洗滌：把溶解好的溶液移入1000ml容量瓶，用容量瓶瓶口較細(xì)的。液體試劑易于分劑量，服用方便。磷酸鈉緩沖液(0.1mol/L,pH5.8-8.0)
試劑的穩(wěn)定性對準(zhǔn)確度非常重要。尿蛋白定性檢測試劑盒(磺基水楊酸法)
如何判斷是否是基質(zhì)效應(yīng)呢？第一種方法是采用線性稀釋，一般來講，抗原和捕獲抗體、檢測抗體之間的結(jié)合作用很強，樣品濃度被稀釋并不影響它們的結(jié)合，而造成基質(zhì)效應(yīng)的非特異結(jié)合的力要弱很多，如果不斷稀釋樣品，非特異結(jié)合造成的干擾會逐步減少，測量值也更接近真實值。沒有基質(zhì)效應(yīng)時，無論如何稀釋，測量值都和真實值吻合。而有基質(zhì)效應(yīng)時，稀釋會造成非特異性結(jié)合比例的減少，測量值也相應(yīng)地產(chǎn)生很大改變。第二種方法是摻入回收率實驗，將低、中和高濃度的分析物摻入到已測定過濃度的樣本中，摻入前后實測到的濃度增加部分與摻入濃度之比就是回收率，回收率以百分比的形式呈現(xiàn)。回收率介于80-120%，才符合標(biāo)準(zhǔn)。尿蛋白定性檢測試劑盒(磺基水楊酸法)