檢測試劑盒實驗經驗分析：吸取液體時，要用量程和需要量接近的去吸，減少誤差。將液體加到酶標孔中時，避免頭和孔內液體接觸，可使頭上的液滴和孔壁接觸，液滴會自然流下去（應該是加樣的時候，板上稀釋不算的吧）。液體全部加完后，可將酶標板在桌子上平行輕輕晃動30秒，混勻液體。也可以用酶標儀的晃動功能（注意是平行晃動，即上下or左右）。溫浴時，要用不干膠或膠帶紙封好酶標板，防止水分的蒸發（老辦法是放入濕盒內，紗布加點無菌水即可）。pH緩沖溶液有何用途：pH測量前標定校準pH計。Miller培養基
pH緩沖溶液有何用途：（1）pH測量前標定校準pH計。（2）用以檢定pH計的準確性，例如，用pH=6.86和pH=14.00，標定pH計后，將pH電極插入pH=9.18溶液中，檢查儀器顯示值和標準溶液的pH值是否一致。（3）在一般精度測量時檢pH計是否需要重新標定。pH計標定并使用后也許會產生漂移或變化，因此在測試前將電極插入與被測溶液比較接近的標準緩沖液中，根據誤差大小確定是否需要重新標定。（4）檢測pH電極的性能。如何配制pH標準緩沖溶液：對于一般pH測量，可使用成套的pH組沖試劑（可配制250mL），配制溶液時，應使用去離子水，并預先煮沸15～30分鐘，以除去溶解的二氧化碳。剪開塑料袋將試劑倒入燒杯中，用適量去離子水使之溶解，并沖洗包裝袋，再倒入250mL容量瓶中，稀釋至刻度，充分搖勻即可。HT Media Supplement(50×)檢測試劑盒洗刷次數越多，布景越低。
潮霉素 B使用方法：一、 儲存液的配制（50mg/ml）稱取1 g 潮霉素B（CH6362）用PBS（0.01 M）溶液或去離子水溶解，定容20ml。0.22μm濾器過濾除菌，分裝于無菌凍存管，2-8℃冷藏，1年內穩定。或直接選購潮霉素B溶液（50mg/ml，CH6361）二、 工作濃度的篩選：潮霉素B用來篩選的工作濃度需要根據細胞類型，培養基，生長條件和細胞代謝率而變化，推薦使用濃度為50-1000μg/mL。對于開始次使用的實驗體系建議通過建立殺滅曲線（kill curve），即劑量反應性曲線，來確定較佳篩選濃度。一般而言，哺乳動物細胞50-500μg/mL；細菌/植物細胞20-200μg/mL；菌類300-1000μg/mL。
標準物質應在規定的貯存或使用條件下，定期地進行待定特性量值的穩定性檢驗。穩定性檢驗的時間間隔可以按先密后疏的原則安排。在有效期間內應有多個時間間隔的監測數據。當標準物質有多個待定特性量值時，應選擇那些易變的和有代表性的特性量值進行穩定性檢驗。選擇不低于定值方法精密度和具有足夠靈敏度的測量方法進行穩定性檢驗，并注意操作及實驗條件的一致。考察穩定性所用樣品應從分裝成小包裝單元的樣品中隨機抽取，抽取的樣品數對于總體樣品有足夠的代表性。PH電極的保護液，即 3mol/L的KCL溶液。
緩沖溶液的緩沖能力：在緩沖溶液中加入少量強酸或強堿，其溶液pH值變化不大，但若加入酸，堿的量多時，緩沖溶液就失去了它的緩沖作用。這說明它的緩沖能力是有一定限度的。緩沖溶液的緩沖能力與組成緩沖溶液的組分濃度有關。0.1mol·L-1HAc和0.1mol· L-1NaAc組成的緩沖溶液，比0.01mol·L-1HAc和0.01mol·L-1NaAc的緩沖溶液緩沖能力大。關于這一點通過計算便可證實。但緩沖溶液組分的濃度不能太大，否則，不能忽視離子間的作用。組成緩沖溶液的兩組分的比值不為1∶1時，緩沖作用減小，緩沖能力降低，當c（鹽）/c（酸）為1∶1時△pH較小，緩沖能力大。不論對于酸或堿都有較大的緩沖作用。緩沖溶液的pH值可用下式計算：此時緩沖能力大。緩沖組分的比值離1∶1愈遠，緩沖能力愈小，甚至不能起緩沖作用。對于任何緩沖體系，存在有效緩沖范圍，這個范圍大致在pKaφ（或pKbφ）兩側各一個pH單位之內。pH緩沖溶液有何用途：在一般精度測量時檢pH計是否需要重新標定。乙酸鈉緩沖液(2mol/L,pH3.6-5.0)
固體試劑一般裝在帶膠木塞的廣口瓶中，液體試劑則盛在細口瓶中。Miller培養基
BCA蛋白檢測試劑盒是進行蛋白質濃度測定的常見的方法之一。BCA蛋白定量的主要原理是：蛋白質在堿性條件下，可以將二價Cu2+離子還原成一價Cu+離子。產生的一價Cu+離子可以與BCA（Bicinchoninicacid）試劑結合，終生成紫色的復合物。該復合物在562nm處有很強的吸收峰。復合物的多少與蛋白質的濃度呈接近的線性關系。BCA蛋白檢測試劑盒有許多優點：檢測的靈敏度高，檢測的蛋白質濃度下限可達20μg/mL。線性范圍廣，在20-2000μg/mL的范圍內，呈接近的線性關系。兼容性良好，產品可以兼容的化學物質非常普遍。Miller培養基