作為一般指導原則，建議使用早期傳代的細胞以獲得良好的轉染效率，特別是涉及原代或干細胞的轉染。另一個有趣的觀察結果是，37℃是可以幫助原代細胞達到更高轉染效率的比較好培養溫度。這種現象可能是因為37攝氏度是哺乳動物細胞的比較好培養溫度。同時，在轉染原代細胞時，化學轉染似乎不如病毒和物理轉染有吸引力，尤其是在人類原代干細胞中。當在相似條件下使用相同的轉染試劑進行轉染時，細胞系的來源(如人類與動物細胞系)也可能有助于不同程度的效率。在一項涉及轉染人類和大鼠平滑肌細胞的研究中，大多數轉染試劑在轉染大鼠平滑肌細胞(α-10SMCs)方面的效率高于轉染人主動脈平滑肌細胞(HASMCs)。在聚葡萄糖、精胺(PG)偶聯物和第四代聚酰胺樹狀大分子(PAMAM G4)的幫助下。陜西武漢轉染試劑
基因注射包括通過注射將所需的核酸物質直接輸送到宿主細胞核中。當細胞轉染具有挑戰性時，特別是當需要對宿主細胞進行遺傳修飾時，這種方法是一種很好的替代方法。與其他非病毒基因傳遞方法一樣，沒有一種方法可以適用于所有不同的細胞類型，選擇合適的細胞類型和核酸大小對于確保基因注射的成功至關重要。例如，先前的一項研究報道了成功生成表達cre重組酶(大小～1,000bp)的轉基因小鼠細胞系。另一方面，在一項體內研究中，表達轉基因的小鼠肌纖維數量與注射次數和給藥質粒劑量相關。另一項體外研究進一步支持了這一觀點，該研究報道了表達報告基因的宿主細胞的數量與注入細胞的核酸量密切相關。此外，微針的大小、形狀和額外涂層的存在也會影響基因注射的效率，因為有報道稱，涂有微顆粒的小尺寸微針(<10毫米)能夠順利地將所需的貨物輸送到皮膚的角質層。陜西武漢轉染試劑流式細胞術可以更精確地定量表達特定熒光基因的細胞，以評估轉染效率。
陽離子聚合物是一種非病毒載體，其結構的一個共同特征是分子中存在許多帶正電的基團，這些基團被質子化成帶正電的聚合物。陽離子聚合物可以通過靜電相互作用結合核酸，并將其凝聚成小的納米顆粒。正電荷改善了與帶負電荷的細胞膜的相互作用，并幫助多聚體在溶酶體降解發生之前逃離核內體。隨后，多聚體通過陽離子聚合物上帶正電基團介導的質子海綿效應從核內體中逸出。此外，核酸必須與陽離子聚合物分離，才能**終發揮其功能。成功的核酸轉染需要轉染效率高、細胞毒性低。在確定陽離子聚合物是否是合適的核酸轉染試劑時，必須考慮這兩個特點。一般認為，陽離子聚合物的分子量越高，其包封核酸和被細胞攝取的能力越強，細胞活力和核酸釋放越差。另一方面，分子量越低的聚合物，其濃縮核酸和被細胞攝取的能力就越低，但在細胞毒性和核酸釋放方面則表現得更好。因此，轉染時應慎重考慮陽離子聚合物的分子量。一些化學修飾，如聚乙二醇化和膽固醇修飾，可以***改善聚合物的性能。此外，可生物降解材料是降低細胞毒性的有效手段。
攜帶要轉染的特定核酸的載體構建可以進一步分為病毒載體或質粒載體。病毒和質粒通過存在合適的真核啟動子促進外源轉基因的表達。病毒載體可能在宿主細胞中觸發免疫原性反應，而非病毒載體的免疫原性相對較低。需要一種傳遞機制來促進靶向核酸或載體結構轉移到宿主細胞中。其中一些需要物理方法，而另一些涉及使用遞送載體，可能是脂質載體或非脂質載體，以幫助增強載體載體復合物與宿主細胞膜之間的接觸，從而促進復合物進入細胞。設計和啟動轉染試驗可能具有挑戰性，特別是可供選擇的轉染方法或策略種類繁多的情況下。在大腸桿菌細胞中復制的質粒通常含有二核苷酸頻率為1:16的CpG基序，這與細菌DNA中的頻率相似。
轉染時通常推薦使用血清減少或無血清培養基，包括陽離子轉染試劑，如Lipofectamine、HiperFect 和EndofectinMax。這種轉染活動需要形成陽離子脂質體-DNA復合物，這需要帶正電的脂質體分子和帶負電的核酸之間的相互作用。因此，血清中負電荷分子的存在可能會影響這種復雜的相互作用，從而影響轉染效率。然而，發現10%血清的存在導致FuGENE HD、jetPEI、Lipofectamine 2000和Arrest-In轉染MCF-7、HeLa、C2C12和MC3T3的轉染效率更高。研究表明，轉染中少量的血清可以通過調節轉染復合物的zeta電位來改善轉染復合物與其宿主細胞表面之間的表面相互作用。共轉染是將一種以上類型的核酸引入真核細胞的過程。陜西武漢轉染試劑
轉染試劑的凍融被認為是另一個可能影響轉染效率的潛在因素。陜西武漢轉染試劑
在腺病毒載體或脂質體的全身遞送后，轉基因表達相對短暫。靜脈注射脂叢的肺表達比給藥后第1天和第2天觀察到的比較大表達量每周減少約1log。造成這種現象的機制可能有以下幾種:(a)產生針對外源基因產物的新***抗體，(b)細胞因子介導的啟動子關閉，(c)通過凋亡、先天或適應性免疫反應根除表達細胞以及（d）表達基因的細胞因細胞凋亡而減少是導致表達減少。這些機制具有重要意義，因為不可能重復給藥，而且轉基因凈表達會隨著時間的推移而減少。盡管通過中和或消除細胞因子的產生可以提高肺中的基因表達水平。靜脈給藥引起的毒性可能是由于小鼠轉氨酶水平的增加，在相同劑量下，小鼠肝臟出現組織病理學病變，但肺部沒有不良反應。這種增加可以通過使用較少的細胞毒性陽離子脂質體（CLs）來控制。轉氨酶的釋放歸因于未甲基化的堿基，如pDNA序列中的胞嘧啶和鳥嘌呤。陜西武漢轉染試劑